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				| 啶虫丙醚检测方法 |  |  |  | 作者:  转载自:  发布日期:2014-9-15 |  |  |  | | | 1.分析目标化合物 啶虫丙醚
 2.仪器设备
 带碱热离子检测器(FTD)、高灵敏度氮磷检测器(NPD)或电子捕获检测器(ECD)的气相色谱仪和气相色谱—质谱仪(GC-MS)。
 3.试剂
 除下列试剂外,使用附录2所列试剂。
 活性炭小柱(250mg):在内径12~13mm聚乙烯管中,填充250mg活性炭或具有同等分离特性的物质。
 啶虫丙醚标准品:含啶虫丙醚98%以上。
 4.试验溶液的制备
 1)提取方法
 在20.0g样品中,加入100mL丙酮,均质后,抽滤。滤纸上残留物中加入50mL丙酮均质,按上述同样过滤,所得的滤液加入丙酮,准确至200mL。吸取其100mL,40℃以下浓缩至约15mL。加入100mL 10%氯化钠溶液,用100mL和50mL正己烷振荡提取二次,提取液中加入无水硫酸钠脱水,滤去无水硫酸钠后,滤液在40℃以下浓缩,除去溶剂。残留物中加入5mL丙酮:甲苯(4:1)混合溶液溶解。
 2)净化方法
 ①活性炭柱色谱法
 在活性炭小柱(250mg)中注入10mL丙酮:甲苯(4:1)混合溶液,弃去流出液。柱中注入1)所得的溶液后,注入15 mL丙酮:甲苯(4:1)混合溶液,全部溶出液在40℃以下浓缩,除去溶剂。残留物中加入5mL正己烷溶解。
 ②酰胺丙基甲硅烷化硅胶柱色谱法
 在酰胺丙基甲硅烷基化硅胶小柱(360mg)中注入10ml正己烷,弃去流出液。柱中注入①所得的溶液后,注入10ml正己烷,全部流出液在40℃以下浓缩,除去溶剂。残留物溶解在丙酮中,准确至2mL作为试验溶液。
 5.标准曲线的制作
 将啶虫丙醚标准品配制成0.1~2 mg/L的丙酮溶液数点,分别注入2μL于GC中,用峰高法或面积法绘制成标准曲线。
 6.定量试验
 注入2μL试验溶液于GC中,根据5的标准曲线求出啶虫丙醚的含量。
 7.测定条件
 1) GC
 检测器:FTD、NPD或ECD
 柱:甲基硅酮,内径 0.53 mm、长15m、膜厚1μm
 柱温: 250℃
 进样器温度:250℃
 检测器温度:280℃
 载气: 氦气(ECD 时为高纯度氮气)
 保留时间标准:4分钟
 2)GC/MS
 柱:5%苯基--甲基硅酮,内径 0.25mm、长 30m,膜厚0.25μm
 柱温: 200℃(1分钟)-10℃/分钟-280℃(5分钟)
 进样器温度:250℃
 载气: 氦气
 离子化方式(电压): EI(70 eV)
 主离子 ( m/z): 204、164、146
 进样量:1μL。
 保留时间标准: 11.5分钟
 8.定量限
 0.02 mg/kg
 9.注意事项
 1) 检测方法概述
 本方法用丙酮从样品中提取啶虫丙醚,转溶于正己烷中。经活性炭小柱和酰胺丙基甲硅烷柱净化后,用GC(FTD、NPD 和ECD)测定、GC/MS 确证。
 2) 注意点
 ① 对于活性炭小柱(250mg),用丙酮:甲苯(4:1)作为溶出溶剂,但如果是绿叶蔬菜之类杂质较多的样品,用乙酸乙酯(20 mL)或丙酮(20 mL)可能溶出来。样品杂质的溶出量,也较用丙酮:甲苯混合溶液的溶出量要低一些。
 ② 净化不充分的情况下,用硅胶小柱 (690 mg)[ 负荷样品溶液后,用10 mL正已烷洗净,用10 mL乙酸乙酯:正已烷(1:19)混合溶液溶出]和十八烷基甲硅烷基化硅胶小柱(1000 mg) [负荷样品溶液后,用10mL乙腈:水(4:1)混合溶液洗浄,用10mL乙腈溶出]进一步净化。
 ③ GC(ECD)测定,很容易受样品杂质的影响,灵敏度因样品变动大。另外,GC/MS 测定,啶虫丙醚的灵敏度因食品的品种有大幅提高的情况。
 ④ 用活性炭小柱净化之前,增加3次乙腈(50 mL)/正已烷 (50 mL)分配,也能对谷类和豆类进行分析。
 
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